Introducere
conidiobolus coronatus (Coronatus) (entomofftară) este o ciupercă de insecte cosmopolită și patogenă a diferitelor ordine1; S-a găsit pe descompunerea lemnului, așternutul de frunze, sol2 și, de asemenea, ca agent patogen al mamiferelor, inclusiv omul, care produce rinoentomoftoromicoză, care afectează suprafața tractului respirator, poate deteriora mucosul nazal și paranasal și chiar se extinde la pielea lui Nasul, zona superioară a buzei și a glablarului frontal3.
Raportul daunelor umane este rar și este limitat la regiuni cu climă tropicală și umiditate ridicată4. Distribuția extinsă a C. Coronatus și câteva cazuri de rochietomoftoză referință sugerează că nu toate izolatele sunt agenți patogeni pentru animalele umane și superioare3,5.
în uzina de producție a ciupercilor (Agaricus Bisporus) Fungi Rioxal (Peri, Veracruz, Mexic) Un focar epizootic de C. Coronatus a fost detectat pe muștele speciei Lycoriella Naive (L. Naive), a considerat principalul dăunător al Champignon6. Ciuperca este produsă în nave închise care prezintă condiții similare unui climat tropical umed7 și în care există muște infectate de C. Coronatus. Lucrătorii sunt expuși ambelor factori pentru perioadele prelungite, ceea ce implică faptul că acestea sunt în contact cu sporii ciupercii și, în ciuda acestui fapt, nu există rezervoare de rinoetomhoromicoză originare în plantele de producție de ciuperci.
Relația dintre C. Coronatus și gama largă de gazde este demnă de studiu și poate fi luată în considerare o indicație a variațiilor intraspecifice. Pe baza celor de mai sus, obiectivul acestei lucrări a fost de a investiga dacă există sau nu variația genetică între izolatele C. coronatus de la rănile umane și alte surse (sol, insectă, compost).
pentru a determina Variabilitatea genetică între izolate de la diferite gazde este necesară pentru a utiliza tehnicile moleculare8. Distanțierul intern transcris (ITS) este cel mai popular locus în cercetarea miologică bazată pe secvențe; Este cel mai de succes pentru identificarea unui număr mare de ciuperci, așa că a fost desemnat ca marker ADN al codului de bare universal pentru ciuperci; În plus, capacitatea sa dovedită de studiu a variației inter-intraspecifică face un instrument foarte puternic9-12. În mod similar, tehnica polimorfismului derivată din amplificarea aleatorie a ADN-ului (RAPD) a dobândit diverse utilizări în studiul diversității genetice; În ciuperci au fost utilizate cu succes în principal în studiile intraepecifice13. Aceste două tehnici au fost implementate în 11 izolate din C. Coronatus, iar rezultatele lor au fost analizate și discutate în funcție de distanța genetică în funcție de sursa de care au fost izolați (sol, insectă și umană).
Materiale și métodosailimente
11 izolatele C. coronatus au fost utilizate; 8 dintre ele au fost obținute din colecții publice și 3 au fost izolate pe cont propriu (Lyco 1, 4 și 5). Toate au fost prelucrate pentru a le analiza cu tehnicile RAPD și amplificarea regiunii RADN-ITS2 ale IS1-5.8s (introni situați între genele RADN 28 și 18). Lista tuturor izolatelor și a sursei care au fost luate este prezentată în tabelul 1.
Lista izolatelor utilizate
div id = „7cf311f914”
HQ602773
HQ602775
Majore 4: 004
muestra de Suelo de una Plantación de pinoa, b, p
Reino Unido
HQ602778
Majore 15: 008
muestra de Suelo de Orillas las de onu Zona de pastoreoa, b, d
Reino Unido
HQ602779
Majore 10: 027
muestra de suelos de Plantación a anchaa hoja, b, p
Reino Unido
HQ602780
Majore 1: 037
muestra de suelos de Plantación una din Pino Alerce (. Larix spp), b, p
Reino Unido
HQ602781
Majore 04: (. Larix spp) 427
muestra de suelos de Plantación una Pino de Alerce este, b, p
Reino Unido
HQ602782
VpCI-126P
Humanob, acesta
India (Norte)
FN421422
Inse ctob, ea
Hungria
AJ345094
FUS 784
champiñónb de compost, acesta
Alemania (Braunschweig)
JN943011.1
FUS 785
Myzus persicaeb, acesta
EE. UU.
JN943012.1
ARSEF: provenientes de la USDA-ARS entomopatogene ciuperca Collection (.. Ithaca, New York, EE UU); ATCC 32865: proveniente de la American Type Culture Collection (.. Rockville, MD, EE UU); Lyco: AISLAMIENTOS estos este colectaron de la pianta de champiñones Rioxal (Mexic); Staffs: procedentes de la Colección del Dr. Arthur A. Callaghan de la Universidad Staffordshire, College Road, Marea Britanie
AISLAMIENTOS usados en el Analisis RAPD.
AISLAMIENTOS usados en el Analisis sale.
AISLAMIENTOS obtenidos en Este estudio.
Las secuencias sa este obtuvieron en este estudio.
Las secuencias sale un obtuvieron del NCBI Genbank.
Los AISLAMIENTOS C . coronatus Lyco 1, 4 y 5 este obtuvieron en la pianta de PRODUCCIÓN de champiñones Hongos Rioxal (Segun Metodo de Papierok Hajek14 y) este Detecto Donde el Brote epizoótico ONU sobre hongo entomopatógeno Moscas de la especie L. ingenua, que fue por el especialista identificado Arthur A. Callagan COMO C. coronatus. Todos astfel încât AISLAMIENTOS presentaron las FACILITĂȚILE morfológicas propias de la especie (ejemplo por, conidios vellosos producidos solo por Esta especie). Realizaron este atât de postulados Koch y con ellos que se comprobó C. coronatus fue el agente cauzal de enfermedad Sobre la L. ingenua.
Los AISLAMIENTOS de 11 C. coronatus este mantuvieron ambiente y ro Temperatura a preservaron Agua estéril destilada. Para su desarrollo este inocularon en MEDIO dextrosa Sabouraud agar la 25 ° C
Extracción de ADN
obtuvo micelio liofilizado de los 11 AISLAMIENTOS de C. coronatus siguiendo por el Metodo descrito Guzmán-Franco et al.15 . El ADN este extrajo mediante el Metodo CTAB (bromuro din hexacetiltrimetilamonio) modificado de Ahrens y Seemüller16. El macerado este colocó en onu tubo Eppendorf câine 400pl de Solucion de lisis (sodio cloruro de 0,4M, Tris-HCI 10mM, EDTA 2 mM, 1% PVP) este mezcló y con onu agitador vortexului homogenizar para. Enseguida este agregaron 50pl de 20% SDS, 40pl de proteinasa K (10 mg / ml), y este incubo la 65 ° C Durante una Hora. Después este agregaron Solucion 600μl de 3% CTAB (Sigma Chemicals, EE. UU.) Y este incubo nuevamente Durante 45min la 65 ° C Posteriormente este adicionó Volumen ONU de cloroformo isoamílico y alcool (24: 1), y este mezcló centrifugó 10min la 14.000rpm, Donde este formaron 2 fases; la fase acuosa este colocó en ne tubo Eppendorf con onu Volumen y izopropanol este incubo la -20 ° C por 60min; después este 10min centrifugó la 14.000rpm. ADN el fue en resuspendido 50pl Agua destilada estéril; concentración y la calidad del ADN este estimó con onu NanoDrop ND-1000 V3.7 (Thermo Scientific®, EE. UU.). Por último, el este ADN visualizó en onu gel al agarosa de 1% din X 1 en TBE tampon (Tris0,089M, Acido bórico 0,089M, 0,002M EDTA) câine teñido bromuro de etidio (0,5μg rent-1 por 10min) y con onu este fotografió fotodocumentador-Gel Doc MOD. 2000 (Bio-Rad®, EE. UU.).
Amplificación RAPD
La reacción en cadena de la polimerasa (PCR por Sus siglas en rumano) este realizó en ne termociclador My Thermal Cycler ™ cycler Bio-Rad Modelo 580BR 09275. Se usaron tubos de 0,5 ml Eppendorf; Volumen el finala de la mezcla fue 25pl / y PCR contenía 4pl de ADN (80ng / ul), 10x tampon, cloruro de magnesio 3mM, 2,5mm de dNTP cada (Gene Choice), 1,5 U de Taq polimerasa (Biogenica) y cada 2pl de iniciador (10pmol).Au fost utilizate inițiatorii aleatorii ai seriei Operon Technology® și seria B de Invitrogen (Tabelul 2). De la 19 inițiatori dovediți, numai cei care au dat rezultate reproductibile (3 amplificări) au fost utilizate în analiza RAPD, așa că la sfârșitul anului 13.
Div>
Secvența inițiatorilor RAPD și a fragmentelor amplificate
Secvență (5 „→ 3 ‘) | Numărul de fragmente | Fragmente polimorfe (%) | 5′-AGTCAGCCCACC-3 ‘ | 2 (22) | |
A18 | 5′-AGGTGACCGT-3 ‘ | 5 | 4 (80) | ||
b01 | 5′-gtt tcg ctc c-3 ‘ | 3 | 3 (100) | ||
B02 | 5′-TGA TCC CTG G-3 ‘ | 3 | 3 (100) | ||
b03 | 5′-CAT CCC CCT G-3 ‘ | 3 | 1 (33) | ||
B04 | 5′-GGA CTG GAG T-3 ‘ | 5 (80) | |||
B06 | 5′-TGC TCT GCC C-3 ‘ | 2 | |||
B07 | 5′-GGT GCA GCA G-3 ‘ | 2 | 1 (50) | ||
B10 | 5′-CTG CTG GGA C-3 ‘ | 2 | |||
B11 | 5′-GTA GTA GAC CCG T-3 ‘ | 2 | 2 (100) | ||
B13 | 5′-TD> | B15 | 5′-GGGG TGT T-3 ‘ | 6 (100) | 5′-AGG GAA CGA G-3 ‘ | 4 (80) |
48 |
Site-uri variabile | |||||
Grup | totals | 1 | 5.8 | ||
19 | 19 | 1 | 9 | ||
Podea | 13 | 8 | 5 | 0 | 2 | 2 |
compost | – | – | – | 1 | |
69 | 3 | 3 |