La Región Intergénica del Gen H2A Apoya Las Subpoblaciones KP1 (-) Y KP1 (+) de Trypanosoma Rangeli

1. Guhl f, vallejo ga. Trypanosoma (Herpetosoma) Rangeli Tejera, 1920: Uma revisão atualizada. MEM INST Oswaldo Cruz. 2003; 98: 435-42.
2. D’Alessandro-Bacigalupo A, Gore-Saravia N. Trypanosoma Rangeli. PT: Gilles HM, editor. Doenças protozoárias. Nova York: Arnold Editores; 1999. P.398-410.
3. Basso B, Moretti Er, Vottero-Cima E. Resposta Imunológica e Infecção de Trypanosoma Cruzi em ratos imunizados de Rangeli Trypanosoma. Sou J Trop Med Hyg. 1991; 44: 413-9.
4. Steindel M, Dias Neto E, Pinto CJ, Green CE, Menezes Cl, Murta Sm, et al. ADN polimórfica aleatoriamente amplificada (RAPD) e análise isoenzima das cepas de Rangeli de Trypanosoma. J Eukariot Microbiol.
1994; 41: 261-7.
5. AGE CE, Campbell da, Romanha AJ. Mini-Exon Gene Sequence Polimorfismo entre as cepas de Rangeli de Trypanosoma isoladas de regiões geográficas distintas. Parasitologia. 1999; 118: 375-82.
6. Vallejo GA, Guhl F, Carranza JC, Lozano Le, Sánchez JL, Jaramillo JC, et al. Os marcadores de KDNA definem duas principais linhagens de Rangeli de Trypanosoma na América Latina. Acta trop. 2002; 81: 77-82.
7. Vallejo GA, guhl F, Carranza JC, Moreno J, Triana O, Green CE. A paridade entre o DNA de Kinetoplast e as sequências do gene mini-exon suportam a evolução clonal ou a especiação nas cepas de Trypanosoma Rangeli isoladas de Rhodnius Colombiensis, R. Pallescens e R. Prolixus na Colômbia. Infecção genet evol. 2003; 3: 39-45.
8. Urrea da, Carranza JC, Cuba Ca, Gurgel-Gonçalves R, Guhl F, Schofield CJ, et al. Caracterização molecular de cepas de Rangeli de Trypanosoma isoladas de Rhodnius Ecuadoriensis em Perú, R. Colombiensis na Colômbia e R. Pallescens em Panamá, apoia uma associação co-evolutiva entre parasitas e vetores. Infecção genet evol. 2005; 5: 123-9.
9. Schofield CJ, Dujardin JP. Teorias sobre a evolução do Rhodnius. Atualizaciones Biológicas. 1999; 21: 183-97.
10. Vallejo GA, Guhl F, Carranza JC, Triana O, Pérez G, Ortiz Pa, et al. Interacción Tripanosoma-Vectorverbrado y Su Relación con La Sistemática Y La Epidemiologia de la Trianossomiasis Americana.
Biomédica. 2007; 27 (SUPP. 1): 110-8.
11. Sánchez IP, Pulido XC, Carranza JC, Triana O, Vallejo Ga. Inmunidad Natural de Rhodnius Prolixus (Hemiptera: Renoviidae: Triatominae) Frente A La Infección con Trypanosoma (herpetosoma) Rangeli
KP1 (-) Aislados de Rhodnius Pallescens, R. Colombiensis y R. Ecuadoriensis. Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas. 2005; 17: 108-18.
12. Cuervo C, López MC, Puerta C. O Trypanosoma Rangeli Histona H2A seqüência genética serve como um marcador diferencial para cepas KP1. Infecção genet evol. 2006; 6: 401-9.
13. Morales l, Romero I, Diez H, Del Portillo P, Montilla M, Nicholls S, et al. Caracterização de um gene de RNA pequeno nucleolar do Trypanosoma Rangeli Candidate e sua aplicação em uma detecção de parasita à base de PCR. Exp parasitol. 2002; 102: 72-80.
14. Teste de fluorescência de Neuraminidase de Schottelius J. Neuraminidase para diferenciação de Trypanosoma Cruzi e Trypanosoma Rangeli. Trop Med Parasitol. 1987; 38: 323-7.
15. Puerta C, Urueña C. Práticas de Biología Molecular. Colección Biblioteca del Profesional. Bogotá: Editorial Pontificia Universidad Javeriana; 2005. p.24-54.
16. Altschul SF, Madden TL, Schaffer Aa, Zhang J, Zhang Z, Miller W, et al. Explosão e Psiblast: Uma nova geração de programas de pesquisa de banco de dados de proteína. Ácidos nucleicos res. 1997; 25: 3389-402.
17. Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ. Clustal W: Melhorando a sensibilidade do alinhamento progressivo de sequência múltipla por meio de pesagem de sequências, Posições de penalidades de lacunas específicas e escolha de matriz de peso. Ácidos nucleicos res. 1994.; 22: 4673-80. 18. Hall ta. Bioedit: Um programa de alinhamento e análise de seqüência de seqüência biológica de fácil utilização para o Windows 95/98 / NT. Ácidos nucleicos symp ser. 1999; 41: 95-8.
19. Saitou N, Neu M. O método de junção de vizinhos: um novo método para reconstruir árvores filogenéticas. Mol Biol Evol. 1987; 4: 406-25.
20. Kumar S, Tamura K, NEI MGA3: Software integrado para análise evolutiva molecular e alinhamento de seqüência. Breve bioinform. 2004; 5: 150-63.
21. Felsenstein J. árvores evolutivas de sequências de DNA: uma abordagem máxima de probabilidade. J mol evol. 1981; 17: 368-76.
22. Kimura M. Um método simples para estimar as taxas evolutivas de substituições básicas por meio de estudos comparativos de sequências nucleotídicas. J mol evol. 1980; 16: 111-20.
23. HASGAWA M, Kishino H, Yano T. Datação da divisão do macaco humano por um relógio molecular do DNA mitocondrial. J mol evol. 1985; 22: 160-74.
24. Lanzotti DJ, Kupsco JM, Yang XC, Dominski Z, Marzluff WF, Duronio RJ. A localização intracelular de proteína de ligação de laço de drosófila é mediada por fosforilação e é necessária para a expressão de mRNA histona regulada por ciclo celular. Célula Mol Biol. 2004; 15: 1112-23.
25. Agabian N. Transplicando Transplicando Nuclear Pré-Mrnas. Célula. 1990; 61: 1157-60.
26. Brandão A, Fernandes O. Trypanosoma Cruzi: Mutações nas 3 ‘Região não traduzida de gene calmodulina são específicas para linhagens T. Cruzi I, T. Cruzi II, e os isolados do ZymodeMe III. Exp parasitol. 2006; 112: 247-52.
27. Maxson R, Cohn R, Kedes L, Mohun T. Expressão e organização de genes histone. Annu Rev Genet. 1983; 17: 239-77.
28. Thomas Mc, Olivares M, Escalante M, Marañón C, Montilla M, Nicholls S, et al. Plasticidade dos genes histone H2A em uma cepas brasileiras e seis colombianas de Trypanosoma Cruzi. Acta trop. 2000; 75: 203-10.
29. Puerta C, Cuervo P, Thomas MC, López MC. Caracterização molecular do gene histono H2A do parasita Trypanosoma Rangeli. Parasitol res. 2000; 86: 916-22.
30. Urueña C, Santander SP. Determinación de la Localización Cromosómica de Los Genes Que Codifical Para La Proteína KMP11 de Trypanosoma Rangeli. . Bogotá: Facultad de Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana; 2003.
31. Da Silva Ra, Bartholomeu DC, Teixeira Sm. Mecanismos de controle da expressão do gene tubulin em Trypanosoma Cruzi. Int j parasitol. 2006; 36: 87-96.
32. Vázquez M, Lorenzi H, Schijman AG, Ben-Dov C, Levin MJ. Análise da distribuição de senhores no genoma nuclear do Trypanosoma Cruzi. Gene. 1999; 239: 207-16.
33. Da Silva FM, Noyes H, Campaner M, Junqueira AC, Coura Jr, Añez N, et al. A filogenia, a taxonomia e o agrupamento de tripanosoma rangeli isolados de homem, triatomínios e mamíferos sylvatic de origem geográfica generalizada com base na SSU e suas seqüências ribossomais. Parasitologia. 2004; 129: 549-61.
34. Maia da Silva F, Rodriguez AC, Campaner M, Takata CS, Brigido MC, Junqueira AC, et al. A análise de DNA polimórfico aleatoriamente amplificada de tripanosoma rangeli e espécies aliadas de humanos, macacos e outros mamíferos sylvatic da Amazônia brasileira divulgou um novo grupo e um marcador específico da espécie. Parasitologia. 2004; 128: 283-94.

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